Mutagênese de saturação de sequência - Sequence saturation mutagenesis

A mutagênese de saturação de sequência ( SeSaM ) é um método de mutagênese aleatória quimioenzimática aplicado para a evolução direcionada de proteínas e enzimas . É uma das técnicas mais comuns de mutagênese por saturação . Em quatro etapas de reação baseadas em PCR , os nucleotídeos fosforotioato são inseridos na sequência do gene , clivados e os fragmentos resultantes alongados por nucleotídeos universais ou degenerados . Esses nucleotídeos são então substituídos por nucleotídeos padrão, permitindo uma ampla distribuição de mutações de ácido nucleico espalhadas pela sequência do gene com preferência por transversões e com um foco único em mutações pontuais consecutivas, ambas difíceis de gerar por outras técnicas de mutagênese. A técnica foi desenvolvida pelo Professor Ulrich Schwaneberg na Jacobs University Bremen e RWTH Aachen University .

Tecnologia, desenvolvimento e vantagens

O SeSaM foi desenvolvido para superar várias das principais limitações encontradas ao trabalhar com métodos de mutagênese padrão baseados em técnicas simples de PCR propenso a erros (epPCR). Essas técnicas de epPCR baseiam-se no uso de polimerases e, portanto, encontram limitações que resultam principalmente da circunstância de que apenas substituições de ácido nucleico únicas, mas muito raramente consecutivas, são realizadas e que essas substituições ocorrem geralmente em posições favorecidas específicas apenas. Além disso, transversões de ácidos nucléicos são muito menos prováveis ​​do que transições e requerem polimerases especificamente projetadas com uma tendência alterada . Essas características das trocas de ácido nucléico catalisadas por epPCR, juntamente com o fato de que o código genético é degenerado, diminuem a diversidade resultante no nível de aminoácidos . Substituições sinônimas levam à preservação de aminoácidos ou mutações conservadoras com propriedades físico-químicas semelhantes, como tamanho e hidrofobicidade, são fortemente prevalentes. Pela introdução não específica de bases universais em cada posição na sequência do gene, SeSaM supera o viés da polimerase favorecendo substituições transitórias em posições específicas, mas abre a sequência completa do gene para uma matriz diversificada de trocas de aminoácidos.

Comparação do padrão de substituição de aminoácidos que pode ser obtido usando métodos epPCR padrão (substituições de nucleotídeo único com tendência de transição) e o método de mutagênese de saturação de sequência (introdução de substituições de nucleotídeos consecutivas com uma razão aumentada de transversões).

Durante o desenvolvimento do método SeSaM, várias modificações foram introduzidas que permitiram a introdução de várias mutações simultaneamente. Outro avanço do método foi alcançado com a introdução de bases degeneradas ao invés da inosina universal e o uso de DNA polimerases otimizadas, aumentando ainda mais a proporção de transversões introduzidas. Além disso, este método SeSaM-TV + modificado permite e favorece a introdução de duas trocas de nucleotídeos consecutivas, ampliando fortemente o espectro de aminoácidos que podem ser substituídos.

Por várias otimizações, incluindo a aplicação de uma quimera polimerase melhorada na Etapa III do método SeSaM-TV-II e a adição de um nucleotídeo degenerado alternativo para a substituição eficiente de bases de timina e citosina e aumento da frequência de mutação em SeSaM-P / R, gerado as bibliotecas foram melhoradas em relação ao número de transversão e o número de mutações consecutivas foi aumentado para 2–4 ​​mutações consecutivas com uma taxa de mutações consecutivas de até 30%.

Procedimento

O método SeSaM consiste em quatro etapas baseadas em PCR que podem ser executadas em dois a três dias. As partes principais incluem a incorporação de nucleotídeos fosforotioatos, a fragmentação química nessas posições, a introdução de bases universais ou degeneradas e sua substituição por nucleotídeos naturais inserindo mutações pontuais.

Etapas experimentais para geração de uma biblioteca de mutagênese aleatória não tendenciosa usando o método de mutagênese de saturação de sequência.

Inicialmente, as sequências universais “SeSaM” são inseridas por PCR com primers específicos do gene que se ligam na frente e atrás do gene de interesse. O gene de interesse com suas regiões flanqueadoras é amplificado para introduzir essas sequências SeSaM_fwd e SeSaM_rev e para gerar o modelo para etapas consecutivas de PCR.

Esses modelos gerados, chamados fwd template e rev templates, são agora amplificados em uma reação de PCR com uma mistura pré-definida de fosforotioato e nucleotídeos padrão para garantir uma distribuição uniforme das mutações inseridas em todo o comprimento do gene. Os produtos de PCR da Etapa 1 são clivados especificamente nas ligações de fosforotioato, gerando um pool de fragmentos de DNA de fita simples de diferentes comprimentos a partir do primer universal.

Na Etapa 2 de SeSaM, as fitas simples de DNA são alongadas por uma a várias bases universais ou degeneradas (dependendo da modificação da SeSaM aplicada) catalisadas pela desoxinucleotidil transferase terminal (TdT). Esta etapa é a etapa chave para introduzir as mutações consecutivas características para transformar códons inteiros aleatoriamente.

Subsequentemente, na Etapa 3, é realizada uma PCR que recombina os fragmentos de DNA de fita simples com o modelo reverso de comprimento total correspondente, gerando o gene de fita dupla de comprimento total incluindo bases universais ou degeneradas em sua sequência.

Por substituição das bases universais / degeneradas na sequência do gene por nucleotídeos padrão aleatórios em SeSaM Etapa 4, uma matriz diversificada de sequências de gene de comprimento total com mutações de substituição é gerada, incluindo uma alta carga de transversões e mutações de substituição subsequentes.

Formulários

SeSaM é usado para otimizar proteínas diretamente no nível de aminoácidos, mas também para identificar preliminarmente as posições dos aminoácidos para testar a mutagênese de saturação para a troca ideal de aminoácidos. O SeSaM foi aplicado com sucesso em inúmeras campanhas de evolução direcionada de diferentes classes de enzimas para seu aprimoramento em propriedades selecionadas, como celulase para resistência a líquido iônico, protease com maior tolerância a detergentes, glicose oxidase para aplicação analítica, fitase com maior termoestabilidade e monooxigenase com catalítico melhorado eficiência usando doadores de elétrons alternativos. O SeSaM é patenteado pelo US770374 B2 em mais de 13 países e é uma das tecnologias de plataforma da SeSaM-Biotech GmbH .

Referências